Культивирование дрожжевых дерматозов. Желатиновые среды

Для культурального исследования дрожжевых дерматозов пользуются средой Сабуро (4% глюкозы, 1% пептона, 1,8% агар-агара), причем, вместо водопроводной воды для приготовления среды, употребляют дрожжевую воду (Е А. Плевако): 20 г сушеных или 80 г прессованных дрожжей кипятят в 1 л водопроводной воды в продолжение 15 минут, фильтруют через бу мажный фильтр, разливают в пробирки и стерилизуют при давлении в 1 атм на протяжении 20 минут.
Дрожжевая вода, благодаря содержанию веществ, необходимых для пи тания грибков (соли, азотистые соединения), способствует их росту.

Кроме плотной питательной среды Сабуро и среды пивное сусло, для обнаружения роста мицелия употребляется картофельная вода. Для этого 2 г тертого картофеля кипятят в 100 г водопроводной воды в продолжение 15 минут, полученную жидкость фильтруют через бумажный фильтр, разливают в пробирки и стерилизуют при давлении в 1 атм. 20 минут.
Способность дрожжевых грибков образовывать аскоспоры выявляют при посеве материала на среду Городковой и на гипсовые блоки.

Среда Городковой. 100 мл дистиллирозанной воды, 1 г пептона, 1 мл мясного бульона, 0,25 г глюкозы, 0,5 г хлористого натрия и 1,8 г агара стерилизуют в продолжение 20 минут при 7г атм
Гипсовые блоки (способ Ганзена) Кусочки гипса по 2—3 см в диаметре и 1—1,5 см высотой стерилизуют сухим жаром при 140 С в чашках Коха

дрожжевые дерматозы

На находящийся в чашке Коха гипсовый кусочек (блок) для влажности наливают 5—6 мл стерилизованной воды, после чего наливают на средину гипсового блока 6 капель жидкой культуры грибка на жидкой среде Через 24 часа, 48 часов и 72 часа берут соскоб с гипсового блока и исследуют его в неокрашенном виде, а также окра шенном по Цилю

Сахарные среды приготовляются путем прибавления к стерилизованной дрожжевой воде 2% сахара, затем вновь стерилизуют 20 минут при давлении в 1/2 атм
Желатиновые среды готовят, прибавляя 15% желатины к объему жидкой питательной среды

Для выделения чистых культур дрожжевых грибков исследуемый материал засевают на три-четыре пробирки свежеприготовленного косого агара Сабуро на дрожжевой воде и ставят в термостат при температуре 30—35° на 3—5—10 дней

Выросшие колонии пересевают на бактериальные чашки с агаром Сабуро на дрожжевой воде, разводя их следующим образом: берут из колонии одну петлю культуры и опускают ее в пробирку с 5 мл стерилизованной водопроводной воды и одну каплю этого разведения размазывают шпателем последовательно на две бактериальные чашки.
Через несколько суток (2—4—6, в зависимости от роста) выросшие колонии пересевают на косой агар Сабуро на дрожжевой воде.

Колонии проросших грибков рода Candida формируются в два основных вида: 1) узорчатые, морщинистые с плотной кожистой поверхностью и 2) с гладким центром, радиальными морщинками и зигзагообразными краями. Колонии имеют светло-серый или мутно-желтоватый цвет.

- Читать далее "Реакция связывания комплемента. Реакция агглютинации с дрожжевым антигеном"

Оглавление темы "Диагностика болезней кожи":
1. Диагностика бластомикоза. Выявление бластомикоза
2. Лабораторная диагностика кокцидиоидного микоза. Диагностика дрожжевых дерматозов
3. Культивирование дрожжевых дерматозов. Желатиновые среды
4. Реакция связывания комплемента. Реакция агглютинации с дрожжевым антигеном
5. Диагностика аспергиллезов. Пенициллиозы и болезнь Боровского
6. Туберкулез кожи. Выявление туберкулеза кожи
7. Микробиология туберкулеза кожи. Бактериоскопическое исследование кожного туберкулеза
8. Бактериоскопия туберкулеза кожи. Биологическое выявление туберкулеза
9. Диагностика проказы. Выявление палочек Ганзена
10. Диагностика сибирской язвы. Бактериологическое исследование сибирской язвы
Все размещенные статьи преследуют образовательную цель и предназначены для лиц имеющих базовые знания в области медицины.
Без консультации лечащего врача нельзя применять на практике любой изложенный в статье факт.
Жалобы и возникшие вопросы просим присылать на адрес statii@dommedika.com
На этот же адрес ждем запросы на координаты авторов статей - быстро их предоставим.